产品货号:
GS0148
中文名称:
一管式RT-PCR试剂盒
英文名称:
One-step RT-PCR Kit(AMV)
产品规格:
10次|100次
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本试剂盒以RNA为模板,RNA→cDNA→PCR在同一体系中连续进行,反应过程中无需添加试剂,无需开盖,避免了污染。一步法RT-PCR技术可用于RNA分子的检测和结构分析、cDNA克隆、RNA水平上的特定的基因表达分析等多种领域的应用。
本试剂盒采用高质量的AMV反转录酶和Taq DNA聚合酶,以及本公司研发的反应体系,大大提高了反应的扩增性能和特异性。本试剂盒已将RT-PCR反应中用到的Buffer、dNTP及体系稳定剂配成10×One Step RT-PCR Buffer,使得实验操作更加方便。
组分 | 10次 | 100次 |
10×One-Step RT-PCR Buffer | 100μL | 1mL |
AMV RTase | 7μL | 50μL |
Taq DNA polymerase | 7μL | 50μL |
RNase inhibitor | 7μL | 50μL |
RNase-free ddH2O | 1mL | 2mL |
MgCl2 (5mM) | 1mL | 2mL |
保存:-20℃
- RNA样品要避免基因组DNA污染。用于cDNA合成的器具须用0.1% DEPC(焦碳酸二乙酯)水溶液37℃处理12h;然后在120℃高压灭菌30min去除残留的DEPC。
- 用于RNA实验的试剂,须使用干热灭菌(180℃,60min)或者上述DEPC处理的器具盛装,使用的无菌水须加入0.1% DEPC,然后进行高温高压灭菌。建议RNA实验使用的器具、试剂和无菌水专用。
- 使用本试剂盒进行RT-PCR反应时,应使用基因特异性引物(GSP),不能使用Oligo dT及随机引物,否则将会导致RT-PCR产生非特异性产物,目标RT-PCR产物的产量也会减少。
- 当同时进行多次RT-PCR反应时,应将各种试剂配制成混合液然后分装到各个管中,以减少实验操作或实验之间的误差(整个反应过程应在冰浴条件下进行)。
- 本试剂盒中的反转录酶可在37~50℃条件下正常工作,42℃为该酶的最适温度。对于富含GC二级结构的RNA,可以适当提高反转录的工作温度,但是温度超过50℃ RT-PCR产物的得率会有所降低。
- 对于大多数模板而言,镁离子终浓度在1.2mM效果较好,如果需要可用提供的5mM MgCl2来进一步调节至更为合适的浓度(通常在1.2~2.0mM之间)。
- 待模板RNA、10×One Step RT-PCR Buffer、特异性引物溶解后,轻微短暂离心,然后冰浴放置。
- 在冰浴的试管中加入如下RT-PCR反应混合物:
成分 用量 10×One-Step RT-PCR Buffer 5μL 正向引物(10μM) 2μL 反向引物(10μM) 2μL AMV RTase 0.5μL RNase inhibitor 0.5μL Taq DNA polymerase 0.5μL 模板RNA X μL RNase-free ddH2O 至50μL - 在PCR仪上按下列条件进行反转录反应
温度 时间 循环数 45℃ 10~30min 1 94℃ 5min 1 94℃ 30sec 30~40 40~65℃ 30sec 72℃ 1 kbp/min 72℃ 10min 1 - 退火温度:根据实际情况,可适当的在40~65℃之间降低或升高退火温度。
- 延伸时间:根据目的产物的长度而定,一般情况下1 kbp需设定时间1min左右。
- 循环次数:通常情况下设定为30~40个循环,cDNA量较少时可适当增加循环次数。
- 退火温度:根据实际情况,可适当的在40~65℃之间降低或升高退火温度。
- 反应结束后,取5~10μL进行琼脂糖凝胶电泳检测。
- RT-PCR电泳条带很弱或者物产无扩增
- 提取的RNA被降解,可能提取或保存的过程中污染了RNase。建议提取RNA的材料要尽量新鲜,实验所用的试剂耗材无核酸酶,提取的RNA于-70℃保存。
- RNA中包含逆转录反应的抑制剂。逆转录抑制剂包含:SDS,EDTA,甘油,亚精胺,焦磷酸钠,甲酰胺和胍盐等。
建议将样品RNA和对照RNA混合,与对照RNA比较产量,以检验是否存在抑制剂。可以通过70%的乙醇对RNA沉淀进行清洗,除去抑制剂。 - PCR反应失败,PCR的退火温度,延伸时间,循环次数不够,同样没有产物扩增。这种情况建议对退火温度进行梯度优化;对于不同目标产物长度的PCR延伸时间建议1 kbp/min;PCR的循环次数建议30~40个循环。
- 第一链cDNA产物取用量过多,建议第一链cDNA产物在进行PCR扩增时,在总的反应体系中的含量不要超过1/10。
- 提取的RNA被降解,可能提取或保存的过程中污染了RNase。建议提取RNA的材料要尽量新鲜,实验所用的试剂耗材无核酸酶,提取的RNA于-70℃保存。
- RT-PCR产物中出现非特异性条带
- 引物和模板非特异性退火。建议在引物设计时避免3'端有2~3个dG或dC;在RT-PCR反应中使用基因特异性引物,而不是随机引物或者oligo dT;使用热启动的Taq DNA聚合酶进行RT-PCR反应,提高反应的特异性。
- 尝试使用降落PCR,在开始几个循环使用较高的退火温度,然后使用较低的退火温度。
- RNA中有基因组DNA污染。使用RNase-free的DNase I处理RNA;可将cDNA进行1:10,1:100,1:1000倍稀释,以降低基因组DNA污染所造成的影响。镁离子的最适浓度通常在1.2~2.0mM。
- 镁离子浓度过高,可对每组模板和引物组合的镁离子浓度进行优化,可从1.0~3.0mM,每隔0.5mM,进行梯度优化,以确定最佳的镁离子浓度。
- 污染外源DNA。RT-PCR反应最好在通风橱或者超净工作台或者比较洁净的环境中进行操作;RT-PCR反应最好使用无核酸酶的离心管,PCR管以及吸头;建议RT-PCR的器具、试剂及无菌水专用;实验操作时注意每次更换吸头。
- 引物和模板非特异性退火。建议在引物设计时避免3'端有2~3个dG或dC;在RT-PCR反应中使用基因特异性引物,而不是随机引物或者oligo dT;使用热启动的Taq DNA聚合酶进行RT-PCR反应,提高反应的特异性。
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